۴۴۵۱پ
per
مطالعه حضور طاعون نشخوارکنندگان کوچک (PPR) به روشPCR - RTدر برخی مناطق مرزی ایران
/فروغ پور عینی
تبریز: دانشگاه تبریز، دانشکده دامپزشکی، گروه علوم درمانگاهی
۸۸ ص
چاپی
دکتری
علوم درمانگاهی
۱۳۹۱/۰۵/۲۵
تبریز: دانشگاه تبریز، دانشکده دامپزشکی، گروه علوم درمانگاهی
طاعون نشخوارکنندگان کوچک یک بیماری مهم ویروسی واگیر درگوسفند و بز است که برای اولین بار در غرب آفریقا در دهه ۱۹۴۰ شرح داده شده است .این بیماری اولین بار در ایران سال ۱۳۷۳ از استان ایلام گزارش شد .عامل بیماری، ویروس طاعون نشخوارکنندگان کوچک یک موربیلی ویروس از خانواده پارامیکسوویریده است که قرابت آنتی‌ژنی نزدیکی با ویروس دیستمپر سگ، طاعون و سرخک در انسان دارد .طاعون در نشخوارکنندگان کوچک با نشانه‌هایی مانند ترشحات موکوسی چرکی از منخرین، تب بالا، ترشحات چشمی، استوماتیت نکروزی، اسهال، آنتریت و پنومونی خود را نشان می‌دهد .در مطالعه حاضر تعداد ۷۰ نمونه خون کامل) از شهرهای کامیاران، پیرانشهر، لاهیجان، قروه و بیله سوار (به وسیله ونوجکت حاویEDTA به میزان۱۰ - ۵میلی لیتر از ورید وداج گوسفند و بز مناطق مرزی اشاره شده اخذ و در مجاورت یخ به آزمایشگاه انتقال یافت .از تعداد ۷۰ نمونه، ۲۸ نمونه خون بز و ۴۲ نمونه متعلق به گوسفند بود که در مجموع شامل ۴۵ دام ماده و ۲۵ دام نر بود .فراونی نمونه ها در شهر قروه۱۳ ، لاهیجان۱۰ ، بیله سوار۱۸ ، کامیاران ۱۳ و پیرانشهر ۱۶ نمونه بود .هدف از انتخاب نقاط ذکر شده، وجود نشانه‌های مانند تلفات بالا، اسهال مقاوم به درمان، سقط و زخم در مخاط آلت تناسلی دام نر در این مناطق بوده است .اخذ نمونه فقط از دام‌های مشکوک بیمار نبوده بلکه از برخی دام های به ظاهر سالم منطقه نیز صورت گرفت .نمونه-های خون در دمای ۴ درجه سانتی گراد و در ۳۰۰۰ دور و به مدت ۱۰ دقیقه سانتریفوژ گردید، سرم جداسازی شد و از بافی کوت جهت استخراج RNA ویروس طاعون نشخوارکنندگان کوچک (PPRV) استفاده شد .روشPCR - RTبا روش های اشاره شده در منابع و با افزودن قطعه bp۴۴۸ اختصاصی ژن F صورت گرفت .در مرحله بعد تمام نمونه ها مجددا توسط Nested PCR آزمایش شدند .به عنوان کنترل مثبت PCR از واکسن زنده طاعون نشخوارکنندگان کوچک استفاده شد .تجزیه و تحلیل داده ها با روش های آماری SPSS و آنالیزهای واریانس انجام شد .از تعداد ۷۰ نمونه مورد مطالعه، ۱۰ نمونه ( (۱۵ مثبت بود .میزان آلودگی در گوسفند و بز به ترتیب ۱۰ و ۲۲ بود و ارتباط معناداری از نظر جنسیت و میزان آلودگی یافت نشد .(<(۰۵/۰p درصد آلودگی در سنین زیر یک سال، یک تا دو سال، دو تا سه سال و بالای سه سال به ترتیب ۱۴ ، ۳۴ ، ۱۲ و ۰تشخیص داده شد اما ارتباط معناداری از نظرگروه های سنی مورد مطالعه و میزان آلودگی یافت نشد .(<(۰۵/۰p درصدآلودگی در شهر قروه ۳۰ ، لاهیجان ۰، بیله سوار ۳۰، کامیاران ۲۰ و پیرانشهر ۲۰ بود، ارتباط معناداری از نظر منطقه مورد مطالعه و میزان آلودگی مشاهده نشد .(<(۰۵/۰p پیشنهاد می شود مطالعات تکمیلی جهت روشن شدن وضعیت آلودگی، در سایر مناطق مرزی کشور انجام گیرد
goat that was reported first time from West Africa in the early decade of 1940s. Outbreak of PPR was diagnosed from Ilam province (Iran) at 1995. The PPR virus belongs to the genus Morbillivirus in the family of Paramyxoviridae. Morbilliviruses has antigenically close related viruses such as: measles, Rinderpest and canine distemper virus. The clinical signs of PPR are characterized by high fever, occulo-nasal discharge, pneumonia, necrosis stomatitis, enteritis, diarrhea and pneumonia. In present study totally 70 whole blood samples were taken via jugular vein from Kamyaran, Piranshahr, Lahijan, Ghorveh and Bilesavar distinct, in a tube with EDTA. The sampling was in the flocks that located near the Iran borders. The samples were sent near the ice container to laboratory. The blood samples included 28 goat and 42 sheep which totally consisted of 45 and 25 female and male respectively. Number of samples from Ghorveh, Lahijan, Billeasavar, Kamiaran and Piranshahr were 13, 10, 18, 13, and 16 respectively. In the mentioned area were observed non-specific symptoms of PPR such as high mortality rate, diarrhea that resistant to the treatment, abortion and observation of ulcer in the penis of the male animals. Sampling was not only from (apparently normal sheep and goats). Blood samples centrifuged at 4 C in 3000 rpm for 10 minutes and serum separated quietly. Buffy coat used for extracting of PPRV (RNA). RT-PCR was performed by using of 448bp that is specific for F gene that was written in the references and literature review. In the second step all of samples were tested with Nested-PCR. Live attenuated vaccine was used as a positive control in PCR. Statistical analysis of data was done by SPSS and analysis of variance. Of 70 samples, N=10 (15 ) were positive in the PCR tests. The infection in sheep and goat was N=4 ( 10) and N=6 ( 22) respectively. Between the gender and infection was no significant differences (P>0/05). Infection in the age group of less than 1, 1-2, 2-3 and over 3 years-old were N=3 ( 14), N=5 ( 34), N=2 ( 12) and 0 respectively and was present no significant difference (P>0/05). In the city of Ghorveh, Lahijan, Billesavar, Kamiaran and Piranshahr were infection with N=3 ( 30), N=0( 0), N=3 ( 30), N=2 ( 20) and N=2 ( 20) respectively. The analysis shown that no significant differences were between the flocks in the locations (P>0/05). Other study were suggested to be done in different borders of Iran for distinguish infection of PPR
PP
Iran
Goat
پور عینی، فروغ
رضا زاده،فریدون، استاد راهنما
مددگار،امید، استاد راهنما
مردانی،کریم، استاد مشاور
سیاه و سفید
نمایه‌سازی قبلی
